Lycopodiella inundata: Unterschied zwischen den Versionen

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Kowal J., Arrigoni E., Serra J., Bidartondo M. (2020) Prevalence and phenology of fine root endophyte colonization across populations of ''Lycopodiella inundata''. Mycorrhiza 30 (5): 577–587.
Kowal J., Arrigoni E., Serra J., Bidartondo M. (2020) Prevalence and phenology of fine root endophyte colonization across populations of ''Lycopodiella inundata''. Mycorrhiza 30 (5): 577–587.
 
<p id="Literatur_Metzing_et_al_2018_13-358">Metzing D., Garve E., Matzke-Hajek G., Adler J., Bleeker W., Breunig T., Caspari S., Dunkel F.G., Fritsch R., Gottschlich G., Gregor T., Hand R., Hauck M., Korsch H., Meierott L., Meyer N., Renker C., Romahn K., Schulz D., Täuber T., Uhlemann I., Welk E., Weyer K. van de, Wörz A., Zahlheimer W., Zehm A. &amp; Zimmermann F. (2018): Rote Liste und Gesamtartenliste der Farn- und Blütenpflanzen (Trachaeophyta) Deutschlands. – In: Metzing D., Hofbauer N., Ludwig G. &amp; Matzke-Hajek G. (Red.): Rote Liste gefährdeter Tiere, Pflanzen und Pilze Deutschlands. Band 7: Pflanzen. – Münster (Landwirtschaftsverlag). – Naturschutz und Biologische Vielfalt 70 (7): 13-358.</p>
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Metzing D., Hofbauer N., Ludwig G., Matzke-Hajek G. (2018) Rote Liste gefährdeter Tiere, Pflanzen und Pilze Deutschlands. Band 7: Pflanzen. Münster (Landwirtschaftsverlag). – Naturschutz und Biologische Vielfalt 70 (7): 784 S.
Metzing D., Hofbauer N., Ludwig G., Matzke-Hajek G. (2018) Rote Liste gefährdeter Tiere, Pflanzen und Pilze Deutschlands. Band 7: Pflanzen. Münster (Landwirtschaftsverlag). – Naturschutz und Biologische Vielfalt 70 (7): 784 S.
<p id="Literatur_Metzing_et_al_2018_13-358">Metzing D., Garve E., Matzke-Hajek G., Adler J., Bleeker W., Breunig T., Caspari S., Dunkel F.G., Fritsch R., Gottschlich G., Gregor T., Hand R., Hauck M., Korsch H., Meierott L., Meyer N., Renker C., Romahn K., Schulz D., Täuber T., Uhlemann I., Welk E., Weyer K. van de, Wörz A., Zahlheimer W., Zehm A. &amp; Zimmermann F. (2018): Rote Liste und Gesamtartenliste der Farn- und Blütenpflanzen (Trachaeophyta) Deutschlands. – In: Metzing D., Hofbauer N., Ludwig G. &amp; Matzke-Hajek G. (Red.): Rote Liste gefährdeter Tiere, Pflanzen und Pilze Deutschlands. Band 7: Pflanzen. – Münster (Landwirtschaftsverlag). – Naturschutz und Biologische Vielfalt 70 (7): 13-358.</p>


Müller F., Ritz C. M., Welk E., Wesche K. (Hrsg.) (2021) Rothmaler Exkursionsflora von Deutschland. Gefäßpflanzen: Grundband. 22. Aufl. Spektrum, Heidelberg, Berlin, 959 S.
Müller F., Ritz C. M., Welk E., Wesche K. (Hrsg.) (2021) Rothmaler Exkursionsflora von Deutschland. Gefäßpflanzen: Grundband. 22. Aufl. Spektrum, Heidelberg, Berlin, 959 S.

Version vom 12. September 2024, 11:36 Uhr

Kennbild Leben Natur Vielfalt – Das Bundesprogramm (BMUV)

Steckbrief: Lycopodiella inundata (L.) Holub – Sumpfbärlapp (Lycopodiaceae)

Weitere Angaben aus Abfragen der Roten Listen (BfN-Prüflisten) …

  • Artname: Lycopodiella inundata (L.) Holub (Bearbeitungsstand: gültig, zum 6.6.2024)

Quellenangaben: siehe Metzing et al. (2018, S.13-358) Daten aus: Farn- und Blütenpflanzen 2009ff, Datenquelle: https://checklisten.rotelistezentrum.de/api/public/1/checklist/43, https://checklisten.rotelistezentrum.de/api/public/1/taxon/35872

Biologie und Ökologie
Gefährdung Verantwortung Verbreitung in Deutschland
gefährdet (Metzing et al. 2018) hohe Verantwortlichkeit (Metzing et al. 2018) Rh, NRW, Ns, BY, BW, HE, TH, Sa, An, BB, MV, SH (Müller et al. 2021)
Gefährdungsursachen Standort Beschreibung
Eutrophierung durch Düngereintrag und Immissionen, Überschüttung, Auffüllung, Entwässerung und Aufforstung von Moorstandorten, Aufhören kleinflächiger Bodenverwundungen (FloraWeb 2022); extrem konkurrenzschwache Art, Populationen verschwinden innerhalb weniger Jahre (WIPs-De) nackte Torfböden und Schlenken in Hoch- und Zwischenmooren, feuchte, schlammig-humose Dünensenken und Feuchtheiden, Störstellen: Kiesgruben (Müller et al. 2021); auf verdichteten Sanden in nährstoffarmen, feuchten Senken, häufig Truppenübungsplätze (WIPs-De) kriechende Stängel 2–10 cm lang, meist nur 1 aufrechter Zweig, Ähre 4–8 cm lang, nur undeutlich vom sterilen Spross abgesetzt, dicker als der Stängel, Pflanze 0,02–0,1 m hoch (Müller et al. 2021)
Lebensform Lebensdauer Mykorrhizierung
Chamaephyt (Müller et al. 2021) ausdauernd (Müller et al. 2021) 17 % Kolonisierung durch arbuskuläre Mykorrhiza im Frühling und 0 % im Herbst, 1 % dunkle, septierte Endophyten im Frühling (Fuchs & Haselwandter 2004); 14 % Kolonisierung mit feinwurzeligen Endophyten im Frühling und 86 % im Herbst (Kowal et al. 2020); Prothallien stets mit Pilz (Goebel 1887)
Blütezeit Bestäubung Kompatibilität
August-Oktober (Müller et al. 2021) - unbekannt: Prothallien monözisch (Goebel 1887)
Sporen Sporenanzahl- und Gewicht Sporenreife und Ausbreitung
Sporangien über den ganzen Sporophyllstand über eine Länge von bis zu 2 cm verteilt (WIPs-De) unbekannt Sporenreife September-Oktober, Windausbreitung; Sporangien reifen von unten nach oben über einen Zeitraum von etwa zwei Wochen (WIPs-De)
Kulturansprüche
Wasserbedarf pH-Spezifität Substratspezifität
dauerfeucht bis nass (WIPs-De) mäßig basenreiche und saure Torfschlamm-Böden (Oberdorfer 1990) gewaschener Quarzsand auf Weißtorf (WIPs-De)
Lichtbedarf Nährstoffbedarf Temperaturansprüche
vollsonnig (WIPs-De) ausgesprochene Stickstoffarmut zeigend, nährstoffarm (FloraWeb 2022) voll frosthart (WIPs-De)
Vermehrung Keimungsansprüche Keimungsdauer
Sprossteile mit Triebspitzen, Wachstum von mehreren Zentimetern im Jahr (WIPs-De); jährliche Verzweigung der Kriechsprosse, selten Brutknospen in Blattachseln der Kriechsprosse, treiben nach Absterben der Kriechsprosse aus (Dostál 1984) unbekannt; Vorkeim an Bodenoberfläche ergrünend (Müller et al. 2021); photosynthetischer Gametophyt (Whittier 1998) Keimung wenige Tage nach dem Freisetzen der Sporen, Vorkeime entwickeln sich innerhalb von 6 Monaten (Huck 2009); im Boden einige Tage (Whittier 1998)
Schädlinge Dormanz und Sporenlebensdauer Hybridisierung
unbekannt Dormanz unbekannt; Sporen mehrere Jahrzehnte im Boden lebensfähig (Sonnberger & Huck 2010) unbekannt
* Angabe bezieht sich auf die Gattung
Sonstiges
Die Art hat einen kürzeren Entwicklungszyklus als andere Bärlapp-Arten und benötigt von der Keimung bis zum reproduzierendem Sporophyten wenige Jahre (Sonnberger & Huck 2010).
Abbildung Verbreitungskarte Deutschland
Habitus von Lycopodiella inundata
(Quelle: NetPhyD, BfN 2013)
(Quelle: NetPhyD, BfN 2013)
Zitatvorschlag: Lauterbach D., Weißbach S., Borgmann P., Daumann J., Kuppinger A.-L., Listl D., Martens A., Nick P., Oevermann S., Poschlod P., Radkowitsch A., Reisch C., Stevens A.-D., Straubinger C., Zachgo S., Zippel E., Burkart M., Plank A. (2024) Steckbrief Lycopodiella inundata; erstellt 2015, zuletzt bearbeitet 12.09.2024. – Netzwerk zum Schutz gefährdeter Wildpflanzen in besonderer Verantwortung Deutschlands (WIPs-De), http://www.wildpflanzenschutz.de/, https://wiki.bgbm.org/wips-daten/index.php/Lycopodiella_inundata.
Literatur

Dostál, J. (1984) Lycopodiaceae. In: Kramer, K. U. (Hrsg): Illustrierte Flora von Mitteleuropa (Hegi), Band I, Teil 1, Pterydophyta. 3. Aufage: 17–42.

FloraWeb (2022) FloraWeb – Daten und Informationen zu Wildpflanzen und zur Vegetation Deutschlands. http://www.floraweb.de/. Zugriff August 2022.

Fuchs B., Haselwandter K. (2004) Red list plants: colonization by arbuscular mycorrhizal fungi and dark septate endophytes. Mycorrhiza 14: 277–281.

Goebel (1887) Ueber Prothallien und Keimpflanzen von Lycopodium inunda. Botanische Zeitung 45, 161–168: 177–190

Huck S. (2009) Artensteckbrief für den Sumpf-Bärlapp (Lycopodiella inundata (L.) Holub). Hessen-Forst, Fachbereich Forsteinrichtung und Naturschutz (FENA).

Kowal J., Arrigoni E., Serra J., Bidartondo M. (2020) Prevalence and phenology of fine root endophyte colonization across populations of Lycopodiella inundata. Mycorrhiza 30 (5): 577–587.

Metzing D., Garve E., Matzke-Hajek G., Adler J., Bleeker W., Breunig T., Caspari S., Dunkel F.G., Fritsch R., Gottschlich G., Gregor T., Hand R., Hauck M., Korsch H., Meierott L., Meyer N., Renker C., Romahn K., Schulz D., Täuber T., Uhlemann I., Welk E., Weyer K. van de, Wörz A., Zahlheimer W., Zehm A. & Zimmermann F. (2018): Rote Liste und Gesamtartenliste der Farn- und Blütenpflanzen (Trachaeophyta) Deutschlands. – In: Metzing D., Hofbauer N., Ludwig G. & Matzke-Hajek G. (Red.): Rote Liste gefährdeter Tiere, Pflanzen und Pilze Deutschlands. Band 7: Pflanzen. – Münster (Landwirtschaftsverlag). – Naturschutz und Biologische Vielfalt 70 (7): 13-358.

\n Metzing D., Hofbauer N., Ludwig G., Matzke-Hajek G. (2018) Rote Liste gefährdeter Tiere, Pflanzen und Pilze Deutschlands. Band 7: Pflanzen. Münster (Landwirtschaftsverlag). – Naturschutz und Biologische Vielfalt 70 (7): 784 S.

Müller F., Ritz C. M., Welk E., Wesche K. (Hrsg.) (2021) Rothmaler Exkursionsflora von Deutschland. Gefäßpflanzen: Grundband. 22. Aufl. Spektrum, Heidelberg, Berlin, 959 S.

Oberdorfer E. (1990) Pflanzensoziologische Exkursionsflora. Ulmer, Stuttgart.

Sonnberger M., Huck S. (2009) Die Bärlappe (Lycopodiaceae) des Anhangs V in Hessen. Tagungsunterlage zur Veranstaltung der Naturschutz-Akademie Hessen „Rentierflechte, Bärlapp & Co.“, Wetzlar.

Whittier P. (1998) Germination of Spores of the Lycopodiaceae in Axenic Culture. American Fern Journal 88: 106–113.

WIPs-De Beobachtungen aus dem Projekt Wildpflanzenschutz Deutschland, Projektlaufzeit 2018–2023.

Erarbeitet im Rahmen des Projektes „WIPs-De – Aufbau eines nationalen Verbundes zum Schutz gefährdeter Wildpflanzenarten in besonderer Verantwortung Deutschlands“.

Kennbild Bundesministerium für Umweit, Naturschutz und nukleare SicherheitKennbild Bundesministerium für NaturschutzKennbild botanischer Wildpflanzenschutz Deutschland (WIPs-De)Kennbild Botanischer Garten, Universität Potsdam (botanischer-garten-potsdam.de)

Gefördert durch das Bundesamt für Naturschutz mit Mitteln des Bundesministeriums für Umwelt, Naturschutz, Bau und Reaktorsicherheit.