Carex trinervis: Unterschied zwischen den Versionen

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== Steckbrief: ''Carex trinervis'' {{Kapitälchen|Degl.}} – <span class="umgangssprachlicher-artname">Dreinervige Segge</span> (Cyperaceae) ==
== Steckbrief: ''Carex trinervis'' {{Kapitälchen|Degl.}} – <span class="umgangssprachlicher-artname">Dreinervige Segge</span> (Cyperaceae) ==


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{{Steckbrief Daten
|PDF Fassung Verantwortungsart=Datei:{{SEITENNAME}} (Steckbrief Verantwortungsart, WIPs-De).pdf
|wissenschaftlicher Artname=''Carex trinervis'' {{Kapitälchen|Degl.}}
|umgangssprachlicher Artname=Dreinervige Segge
|Vorschaubild Verantwortungsart=Datei:Herbarbeleg von Carex trinervis (Herbarium Naturalis, L.3749939).jpg
|Vorschaubild versteckte Bildbeschreibung=Vorschaubild (Herbarbeleg) der Verantwortungsart Dreinervige Segge (''Carex trinervis'' {{Kapitälchen|Degl.}})
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{{Artangaben BfN Prüfliste
{{Artangaben BfN Prüfliste
|Sofortabfrage ausführen mit=Carex trinervis Degl.
|Sofortabfrage ausführen mit=Carex trinervis Degl.
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| Bebauung, ausbleibende Küsten-dynamik (Floraweb 2021)
| Bebauung, ausbleibende Küsten-dynamik (Floraweb 2021)
| Dünentäler (Conert et al. 1980, Oberdorfer 2001); Kleinseggensümpfe feuchter Dünentäler, Feuchtheiden, Verlandungszonen kleiner, natürlicher oder anthropogener Gewässer (Kiffe 1997); frische bis wechselnasse Kleinseggenriede und Röhrichte in Küstendünentälern (Jäger 2017)
| Dünentäler (Conert et al. 1980, Oberdorfer 2001); Kleinseggensümpfe feuchter Dünentäler, Feuchtheiden, Verlandungszonen kleiner, natürlicher oder anthropogener Gewässer (Kiffe 1997); frische bis wechselnasse Kleinseggenriede und Röhrichte in Küstendünentälern (Jäger 2017)
| Pflanzenhöhe 10-30(-60) cm, mit langen Ausläufern, unterste Blattscheiden meist hell-, selten kaffee- bis dunkelbraun, Stängel und Blätter aufrecht oder leicht gekrümmt, stumpf 3-kantig. Blätter grau- oder blaugrün, 2(-3) mm breit, rinnig zusammengefaltet, starr, schmal linealisch, allmählich in die 3-kantige Spitze verschmälert, Blütenstand mit (1-)2–3 männlichen und 2-3(-4) weiblichen Ährchen, unterstes Hüllblatt des Blütenstandes laubblattartig, meist länger (bis mehr als doppelt so lang) wie der Blütenstand, Spelzen der männlichen Ährchen mit einem auffälligen, hellen Hautrand, Schläuche 3,5–5 mm lang und ca 2 mm breit, Narben 2 (Floraweb 2021); Rhizomdurchmesser 2,5 bis 4 mm, Spaltöffnungen auf beiden Blattseiten (Foley 2005); Verwechslungsmöglichkeit mit ''C. nigra'', diese mit geringerem Rhizomdurchmesser 1,5 bis 2,0(2,5) mm, Blätter ± flach, Spaltöffnungen nur auf Blattoberseite, unterstes Hüllblatt kürzer oder so lang wie Blütenstand (Foley 2005)
| Pflanzenhöhe 10–30(–60) cm, mit langen Ausläufern, unterste Blattscheiden meist hell-, selten kaffee- bis dunkelbraun, Stängel und Blätter aufrecht oder leicht gekrümmt, stumpf 3-kantig. Blätter grau- oder blaugrün, 2(–3) mm breit, rinnig zusammengefaltet, starr, schmal linealisch, allmählich in die 3-kantige Spitze verschmälert, Blütenstand mit (1–)2–3 männlichen und 2–3(–4) weiblichen Ährchen, unterstes Hüllblatt des Blütenstandes laubblattartig, meist länger (bis mehr als doppelt so lang) wie der Blütenstand, Spelzen der männlichen Ährchen mit einem auffälligen, hellen Hautrand, Schläuche 3,5–5 mm lang und ca 2 mm breit, Narben 2 (Floraweb 2021); Rhizomdurchmesser 2,5 bis 4 mm, Spaltöffnungen auf beiden Blattseiten (Foley 2005); Verwechslungsmöglichkeit mit ''C. nigra'', diese mit geringerem Rhizomdurchmesser 1,5 bis 2,0(2,5) mm, Blätter ± flach, Spaltöffnungen nur auf Blattoberseite, unterstes Hüllblatt kürzer oder so lang wie Blütenstand (Foley 2005)
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! Lebensform
! Lebensform
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| Samen und vegetativ (Biolflor 2021); vegetative Ausbreitung durch lange kräftige (Conert et al. 1980)
| Samen und vegetativ (Biolflor 2021); vegetative Ausbreitung durch lange kräftige (Conert et al. 1980)
| Keimung: Herbst-Frühling (Muller 1978); Kältekeimer (''C. nigra'', Jäger 2017); Licht- und Dunkelkeimung möglich (''C. nigra'', Schütz 1999); Kältestratifikation 4 bis 6 Monate notwendig (''C. nigra'', Fernández-Pascual 2016)
| Keimung: Herbst-Frühling (Muller 1978); Kältekeimer (''C. nigra'', Jäger 2017); Licht- und Dunkelkeimung möglich (''C. nigra'', Schütz 1999); Kältestratifikation 4 bis 6 Monate notwendig (''C. nigra'', Fernández-Pascual 2016)
| t´50-Wert: 10 Tage (''C. nigra'', Schütz 1999); geringe Keimrate unter 20 %, großer Anteil an tauben Samen ca. 75 % (''C. nigra'', Fernández-Pascual 2016)
| t’50-Wert: 10 Tage (''C. nigra'', Schütz 1999); geringe Keimrate unter 20 %, großer Anteil an tauben Samen ca. 75 % (''C. nigra'', Fernández-Pascual 2016)
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! Schädlinge
! Schädlinge
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| ''C.'' × ''timmiana'' Junge (''C. nigra'' × ''C. trinervis'') (Kiffe 1997, Von Bargen 1998)''; Carex'' × ''terschellingensis'' Jac. Koopman, Więcław &amp; Waltje (''C. acuta'' × ''C. trinervis'') (Koopman et al. 2021)
| ''C.'' × ''timmiana'' Junge (''C. nigra'' × ''C. trinervis'') (Kiffe 1997, Von Bargen 1998)''; Carex'' × ''terschellingensis'' Jac. Koopman, Więcław &amp; Waltje (''C. acuta'' × ''C. trinervis'') (Koopman et al. 2021)
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| colspan="3"| t'50-Wert: Anzahl an Tagen, nach denen die Hälfte der Gesamtkeimrate erreicht wurde; <span id="fusznote_sternchen">*</span> Angabe bezieht sich auf die Gattung
| colspan="3"| t’50-Wert: Anzahl an Tagen, nach denen die Hälfte der Gesamtkeimrate erreicht wurde; <span id="fusznote_sternchen">*</span> Angabe bezieht sich auf die Gattung
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Ellenberg H., Weber H. E., Düll R., Wirth V., Werner W., Paulißen D. (1992) Zeigerwerte von Pflanzen in Mitteleuropa. Scripta Geobotanica 18: 1-258. 2. überarbeitete Auflage.
Ellenberg H., Weber H. E., Düll R., Wirth V., Werner W., Paulißen D. (1992) Zeigerwerte von Pflanzen in Mitteleuropa. Scripta Geobotanica 18: 1-258. 2. überarbeitete Auflage.


Floraweb (2021) FloraWeb - Daten und Informationen zu Wildpflanzen und zur Vegetation Deutschlands. http://www.floraweb.de/. Zugriff am 30.06.2021.
Floraweb (2021) FloraWeb Daten und Informationen zu Wildpflanzen und zur Vegetation Deutschlands. http://www.floraweb.de/. Zugriff am 30.06.2021.


Fernández-Pascual E. (2016) Comparative seed germination traits in bog and fen mire wetlands. Aquatic Botany 130: 21-26
Fernández-Pascual E. (2016) Comparative seed germination traits in bog and fen mire wetlands. Aquatic Botany 130: 21–26


Foley M. J. Y. (2005) ''Carex trinervis'' Degl. (Cyperaceae) — a western European coastal endemic. Candollea 60(1): 87-95.
Foley M. J. Y. (2005) ''Carex trinervis'' Degl. (Cyperaceae) — a western European coastal endemic. Candollea 60(1): 87–95.


Jäger E. J. (Hrsg.) (2017) Rothmaler Exkursionsflora von Deutschland. Gefäßpflanzen: Grundband. 21. Aufl. Spektrum, Heidelberg, Berlin.
Jäger E. J. (Hrsg.) (2017) Rothmaler Exkursionsflora von Deutschland. Gefäßpflanzen: Grundband. 21. Aufl. Spektrum, Heidelberg, Berlin.


Kiffe K. (1997) Zum Vorkommen von ''Carex nigra'' (L.) Reichard × ''Carex trinervis'' Degland (= ''Carex'' × ''timmiana'' P. Junge) in Deutschland. ''Drosera'' 97: 65-70.
Kiffe K. (1997) Zum Vorkommen von ''Carex nigra'' (L.) Reichard × ''Carex trinervis'' Degland (= ''Carex'' × ''timmiana'' P. Junge) in Deutschland. ''Drosera'' 97: 65–70.


Koopman J., Więcław H., Waltje H. (2021) ''Carex'' × ''terschellingensis'' hybr. nov.[= ''Carex acuta'' × ''C. trinervis''] and ''Carex'' × ''reichgeltii'' hybr. nov.[= ''Carex acuta'' × ''C. aquatilis''], Cyperaceae, found in the Netherlands. Gorteria Dutch Botanical Archives 43: 27-34.
Koopman J., Więcław H., Waltje H. (2021) ''Carex'' × ''terschellingensis'' hybr. nov.[= ''Carex acuta'' × ''C. trinervis''] and ''Carex'' × ''reichgeltii'' hybr. nov.[= ''Carex acuta'' × ''C. aquatilis''], Cyperaceae, found in the Netherlands. Gorteria Dutch Botanical Archives 43: 27–34.


Lammerts E. J., Grootjans A., Stuyfzand P., Sival F. (1995) Endangered dune slack plants; gastronomers in need of mineral water. In Salman A. H. P. M., H. Berends, M. Bonazountas (eds), Coastal Management and Habitat Conservation. EUCC, Leiden: 355–369.
Lammerts E. J., Grootjans A., Stuyfzand P., Sival F. (1995) Endangered dune slack plants; gastronomers in need of mineral water. In Salman A. H. P. M., H. Berends, M. Bonazountas (eds), Coastal Management and Habitat Conservation. EUCC, Leiden: 355–369.
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Muller F. M. (1978) Seedling of the North-Western European lowland. Center for Agriculture Publishing and Documentation Wageningen, Boston.
Muller F. M. (1978) Seedling of the North-Western European lowland. Center for Agriculture Publishing and Documentation Wageningen, Boston.


Nakamatte E., Arnstein Lye K. (2007) AFLP‐based differentiation in north Atlantic species of ''Carex'' sect. Phacocystis. Nordic Journal of Botany 25: 318-328.
Nakamatte E., Arnstein Lye K. (2007) AFLP‐based differentiation in north Atlantic species of ''Carex'' sect. Phacocystis. Nordic Journal of Botany 25: 318–328.


Netzwerk Phytodiversität Deutschlands e.V. (NetPhyD) und Bundesamt für Naturschutz (BfN) (Hrgs.) (2013) Verbreitungsatlas der Farn- und Blütenpflanzen Deutschlands. Landwirtschaftsverlag, Münster.
Netzwerk Phytodiversität Deutschlands e.V. (NetPhyD) und Bundesamt für Naturschutz (BfN) (Hrgs.) (2013) Verbreitungsatlas der Farn- und Blütenpflanzen Deutschlands. Landwirtschaftsverlag, Münster.
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Oberdorfer E. (2001) Pflanzensoziologische Exkursionsflora für Deutschland und angrenzende Gebiete. 8. Auflage. Verlag Eugen Ulmer, Stuttgart, S. [1]–1051.
Oberdorfer E. (2001) Pflanzensoziologische Exkursionsflora für Deutschland und angrenzende Gebiete. 8. Auflage. Verlag Eugen Ulmer, Stuttgart, S. [1]–1051.


Schütz W. (1999) Germination responses of temperate ''Carex''-species to diurnally fluctuating temperatures–a comparative study. Flora, 194: 21-32.
Schütz W. (1999) Germination responses of temperate ''Carex''-species to diurnally fluctuating temperatures–a comparative study. Flora, 194: 21–32.


Von Bargen D. (1998) Ein Vorkommen von ''Carex'' × ''timmiana'' JUNGE [''Carex nigra'' (L.) REICHARD × ''Carex trinervis'' DEGL.] auf Langeoog. – Abh. Naturwiss. Ver. Bremen 44: 215-223.
Von Bargen D. (1998) Ein Vorkommen von ''Carex'' × ''timmiana'' JUNGE [''Carex nigra'' (L.) REICHARD × ''Carex trinervis'' DEGL.] auf Langeoog. – Abh. Naturwiss. Ver. Bremen 44: 215–223.


Wallnöfer B. (2006) Die Verteilung der Stomata auf den Laubblättern als wichtiges diagnostisches Merkmal zur Unterscheidung der Arten und Hybriden in der ''Carex acuta''- und ''C. rostrata''-Verwandtschaft (Cyperaceae). Neilreichia 4: 195-208.
Wallnöfer B. (2006) Die Verteilung der Stomata auf den Laubblättern als wichtiges diagnostisches Merkmal zur Unterscheidung der Arten und Hybriden in der ''Carex acuta''- und ''C. rostrata''-Verwandtschaft (Cyperaceae). Neilreichia 4: 195–208.
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Quellenangaben der BfN-Prüflisten/Rote Listen
Quellenangaben der BfN-Prüflisten/Rote Listen

Neueste Überarbeitung vom 28. November 2024, 17:07 Uhr

Kennbild Leben Natur Vielfalt – Das Bundesprogramm (BMUV)

Steckbrief: Carex trinervis Degl. – Dreinervige Segge (Cyperaceae)

Weitere Angaben aus Abfragen der Roten Listen (BfN-Prüflisten) …

Angaben zum Artnamen Carex trinervis Degl. (Abfragezeit: 22. Januar 2026, 04.47 Uhr):
  • anerkannte Namen: Carex trinervis Degl.[1]; Carex trinervis[2]; Carex trinervis Degl.[3];
  • Synonyme: (derzeit ohne Eintragungen)
Biologie und Ökologie
Gefährdung Verantwortung Verbreitung in Deutschland
stark gefährdet (Metzing et al 2018) hohe Verantwortlichkeit (Metzing et al 2018) NI (Jäger 2017)
Gefährdungsursachen Standort Beschreibung
Bebauung, ausbleibende Küsten-dynamik (Floraweb 2021) Dünentäler (Conert et al. 1980, Oberdorfer 2001); Kleinseggensümpfe feuchter Dünentäler, Feuchtheiden, Verlandungszonen kleiner, natürlicher oder anthropogener Gewässer (Kiffe 1997); frische bis wechselnasse Kleinseggenriede und Röhrichte in Küstendünentälern (Jäger 2017) Pflanzenhöhe 10–30(–60) cm, mit langen Ausläufern, unterste Blattscheiden meist hell-, selten kaffee- bis dunkelbraun, Stängel und Blätter aufrecht oder leicht gekrümmt, stumpf 3-kantig. Blätter grau- oder blaugrün, 2(–3) mm breit, rinnig zusammengefaltet, starr, schmal linealisch, allmählich in die 3-kantige Spitze verschmälert, Blütenstand mit (1–)2–3 männlichen und 2–3(–4) weiblichen Ährchen, unterstes Hüllblatt des Blütenstandes laubblattartig, meist länger (bis mehr als doppelt so lang) wie der Blütenstand, Spelzen der männlichen Ährchen mit einem auffälligen, hellen Hautrand, Schläuche 3,5–5 mm lang und ca 2 mm breit, Narben 2 (Floraweb 2021); Rhizomdurchmesser 2,5 bis 4 mm, Spaltöffnungen auf beiden Blattseiten (Foley 2005); Verwechslungsmöglichkeit mit C. nigra, diese mit geringerem Rhizomdurchmesser 1,5 bis 2,0(2,5) mm, Blätter ± flach, Spaltöffnungen nur auf Blattoberseite, unterstes Hüllblatt kürzer oder so lang wie Blütenstand (Foley 2005)
Lebensform Lebensdauer Mykorrhizierung
Hemikryptophyt, Helophyt (Jäger 2017); Geophyt (Oberdorfer 2001) ausdauernd (Jäger 2017) unbekannt, arbuskuläre Mykorrhiza (C. nigra, Cooke & Lefor 1998)
Blütezeit Bestäubung Kompatibilität
Mai bis Juni (Foley 2005); Juni bis Juli (Jäger 2017) Windbestäubung (Jäger 2017*) selbstkompatibel (East 1940*)
Frucht und Samen Samenanzahl- und Gewicht Samenreife und Ausbreitung
Nuss: 1,7 bis 2,8 mm lang, 1,3 bis 1,8 mm breit, 0,6 mm hoch (Biolflor 2021); dunkelbraune bis fast schwarze Frucht, 2–2,5 mm lang, 1,5 mm breit, eiförmig bis verkehrt eiförmig, bikonvex (Conert et al. 1980) unbekannt unbekannt, Wasserausbreitung (C. nigra, Jäger 2017)
Kulturansprüche
Wasserbedarf pH-Spezifität Substratspezifität
Nässezeiger (Ellenberg et al. 1992, Oberdorfer 2001) Säurezeiger (Ellenberg et al. 1992, Oberdorfer 2001); pH 4,9 (Lammerts et al. 1995); kalkmeidend (Jäger 2017) anmoorige Böden (Oberdorfer 2001)
Lichtbedarf Nährstoffbedarf Temperaturansprüche
Volllichtpflanze (Ellenberg et al. 1992) Stickstoffarmut zeigend (Ellenberg et al. 1992); nährstoffarm (Hegi 1980); nährstoffarm, NaCl: 0,01 %, C: 4,75 %, N: 0,21 %, C/N-Verhältnis: 23,3, P (mg/ 100 g): 29 (Lammerts et al. 1995) Mäßigwärme- bis Wärmezeiger (Ellenberg et al. 1992)
Vermehrung Keimungsansprüche Keimungsdauer
Samen und vegetativ (Biolflor 2021); vegetative Ausbreitung durch lange kräftige (Conert et al. 1980) Keimung: Herbst-Frühling (Muller 1978); Kältekeimer (C. nigra, Jäger 2017); Licht- und Dunkelkeimung möglich (C. nigra, Schütz 1999); Kältestratifikation 4 bis 6 Monate notwendig (C. nigra, Fernández-Pascual 2016) t’50-Wert: 10 Tage (C. nigra, Schütz 1999); geringe Keimrate unter 20 %, großer Anteil an tauben Samen ca. 75 % (C. nigra, Fernández-Pascual 2016)
Schädlinge Dormanz und Samenlebensdauer Hybridisierung
Blattläuse an Sprossbasis möglich (Brickell 2000*) unbekannt, physiologische Dormanz (C. nigra, Baskin & Baskin 1998); Samen langlebig (C. nigra, Schütz 1999, Jäger 2017) C. × timmiana Junge (C. nigra × C. trinervis) (Kiffe 1997, Von Bargen 1998); Carex × terschellingensis Jac. Koopman, Więcław & Waltje (C. acuta × C. trinervis) (Koopman et al. 2021)
t’50-Wert: Anzahl an Tagen, nach denen die Hälfte der Gesamtkeimrate erreicht wurde; * Angabe bezieht sich auf die Gattung
Sonstiges
einzige Art in der Untergattung Eucarex mit amphistomatischen Blättern (Floraweb 2021, Wallnöfer 2006); C. trinervis enger mit C. acuta verwandt als mit C. nigra (Nakamatte et al. 2007); Samen befinden sich in oberen Bodenschicht 0–5 cm, Samen wahrscheinlich langlebig, mehrere Jahrzehnte (C. nigra/ C. trinervis, Bekker et al. 1999)
Abbildung Verbreitungskarte Deutschland
Same von Carex trinervis (Foto: Botanischer Garten der Universität Osnabrück, S. Oevermann)
Same von Carex trinervis
(Foto: Botanischer Garten der Universität Osnabrück, S. Oevermann)
(Quelle: NetPhyD, BfN 2013)
(Quelle: NetPhyD, BfN 2013)
Zitiervorschlag: Weißbach S., Lauterbach D. Heinken-Šmídová A., Tschöpe A., Plank A. (2024) Steckbrief Carex trinervis; erstellt am 28.03.2022, zuletzt bearbeitet 28.11.2024. – Netzwerk zum Schutz gefährdeter Wildpflanzen in besonderer Verantwortung Deutschlands (WIPs-De), http://www.wildpflanzenschutz.de/, https://wiki.bgbm.org/wips-daten/index.php/Carex_trinervis.
Literatur

Baskin C. C., Baskin J. M. (1998) Seeds: ecology, biogeography, and, evolution of dormancy and germination. Academic Press Elsevier, California.

Bekker R. M., Lammerts E. J., Schutter A., Grootjans A. P. (1999) Vegetation development in dune slacks: the role of persistent seed banks. Journal of Vegetation Science 10: 745–754.

Biolflor (2021) Biolflor, Datenbank biologisch-ökologischer Merkmale der Flora von Deutschland. http://www.ufz.de/biolflor/index.jsp. Zugriff am 30.06.2021.

Brickell C. (2000) DuMont’s Große Pflanzen-Enzyklopädie. The Royal Horticultural Society, DuMont Buchverlag, Köln, 3. Auflage.

Buttler K. P., May R. & Metzing D. (2018): Liste der Gefäßpflanzen Deutschlands. – BfN-Skripten 519, 286 S.

Conert H. J., Hamann U., Schultze-Motel W., Wagenitz G (Hrsg.) (1980) Gustav Hegi. Illustrierte Flora von Mitteleuropa. Band II. Teil 1. Verlag Paul Parey, Berlin und Hamburg, 3. Auflage.

Cooke J. C., Lefor M. W. (1998) The mycorrhizal status of selected plant species from Connecticut wetlands and transition zones. Restoration Ecolog y6:214–222.

East E. M. (1940) The distribution of self-sterility in the flowering plants. Proceedings of the American Philosophical Society 82:449–518.

Ellenberg H., Weber H. E., Düll R., Wirth V., Werner W., Paulißen D. (1992) Zeigerwerte von Pflanzen in Mitteleuropa. Scripta Geobotanica 18: 1-258. 2. überarbeitete Auflage.

Floraweb (2021) FloraWeb – Daten und Informationen zu Wildpflanzen und zur Vegetation Deutschlands. http://www.floraweb.de/. Zugriff am 30.06.2021.

Fernández-Pascual E. (2016) Comparative seed germination traits in bog and fen mire wetlands. Aquatic Botany 130: 21–26

Foley M. J. Y. (2005) Carex trinervis Degl. (Cyperaceae) — a western European coastal endemic. Candollea 60(1): 87–95.

Jäger E. J. (Hrsg.) (2017) Rothmaler Exkursionsflora von Deutschland. Gefäßpflanzen: Grundband. 21. Aufl. Spektrum, Heidelberg, Berlin.

Kiffe K. (1997) Zum Vorkommen von Carex nigra (L.) Reichard × Carex trinervis Degland (= Carex × timmiana P. Junge) in Deutschland. Drosera 97: 65–70.

Koopman J., Więcław H., Waltje H. (2021) Carex × terschellingensis hybr. nov.[= Carex acuta × C. trinervis] and Carex × reichgeltii hybr. nov.[= Carex acuta × C. aquatilis], Cyperaceae, found in the Netherlands. Gorteria Dutch Botanical Archives 43: 27–34.

Lammerts E. J., Grootjans A., Stuyfzand P., Sival F. (1995) Endangered dune slack plants; gastronomers in need of mineral water. In Salman A. H. P. M., H. Berends, M. Bonazountas (eds), Coastal Management and Habitat Conservation. EUCC, Leiden: 355–369.

Metzing D., Hofbauer N., Ludwig G., Matzke-Hajek G. (2018) Rote Liste gefährdeter Tiere, Pflanzen und Pilze Deutschlands. Band 7: Pflanzen. Münster (Landwirtschaftsverlag). – Naturschutz und Biologische Vielfalt 70 (7): 784 S.

Muller F. M. (1978) Seedling of the North-Western European lowland. Center for Agriculture Publishing and Documentation Wageningen, Boston.

Nakamatte E., Arnstein Lye K. (2007) AFLP‐based differentiation in north Atlantic species of Carex sect. Phacocystis. Nordic Journal of Botany 25: 318–328.

Netzwerk Phytodiversität Deutschlands e.V. (NetPhyD) und Bundesamt für Naturschutz (BfN) (Hrgs.) (2013) Verbreitungsatlas der Farn- und Blütenpflanzen Deutschlands. Landwirtschaftsverlag, Münster.

Oberdorfer E. (2001) Pflanzensoziologische Exkursionsflora für Deutschland und angrenzende Gebiete. 8. Auflage. Verlag Eugen Ulmer, Stuttgart, S. [1]–1051.

Schütz W. (1999) Germination responses of temperate Carex-species to diurnally fluctuating temperatures–a comparative study. Flora, 194: 21–32.

Von Bargen D. (1998) Ein Vorkommen von Carex × timmiana JUNGE [Carex nigra (L.) REICHARD × Carex trinervis DEGL.] auf Langeoog. – Abh. Naturwiss. Ver. Bremen 44: 215–223.

Wallnöfer B. (2006) Die Verteilung der Stomata auf den Laubblättern als wichtiges diagnostisches Merkmal zur Unterscheidung der Arten und Hybriden in der Carex acuta- und C. rostrata-Verwandtschaft (Cyperaceae). Neilreichia 4: 195–208.


Quellenangaben der BfN-Prüflisten/Rote Listen

  1. 1,0 1,1 Metzing, D.; Garve, E.; Matzke-Hajek, G.; Adler, J.; Bleeker, W.; Breunig, T.; Caspari, S.; Dunkel, F.G.; Fritsch, R.; Gottschlich, G.; Gregor, T.; Hand, R.; Hauck, M.; Korsch, H.; Meierott, L.; Meyer, N.; Renker, C.; Romahn, K.; Schulz, D.; Täuber, T.; Uhlemann, I.; Welk, E.; Weyer, K. van de; Wörz, A.; Zahlheimer, W.; Zehm, A. & Zimmermann, F. (2018): Rote Liste und Gesamtartenliste der Farn- und Blütenpflanzen (Trachaeophyta) Deutschlands. – In: Metzing, D.; Hofbauer, N.; Ludwig, G. & Matzke-Hajek, G. (Red.): Rote Liste gefährdeter Tiere, Pflanzen und Pilze Deutschlands. Band 7: Pflanzen. – Münster (Landwirtschaftsverlag). – Naturschutz und Biologische Vielfalt 70 (7): 13-358. (Datenquellen: checklisten.rotelistezentrum.de/api/public/1/checklist/43; taxon/36516 – für das Gebiet Deutschland)
  2. 2,0 2,1 BfN (2020): Rekonstruierte Checkliste zu Korneck, D.; Schnittler, M. & Vollmer, I. (1996): Rote Liste der Farn- und Blütenpflanzen (Pteridophyta et Spermatophyta) Deutschlands. – In: Bundesamt für Naturschutz (Hrsg.): Rote Liste gefährdeter Pflanzen Deutschlands. – Bonn (Bundesamt für Naturschutz). – Schriftenreihe für Vegetationskunde 28: 21-187. (Datenquellen: checklisten.rotelistezentrum.de/api/public/1/checklist/251; taxon/316560 – für das Gebiet Deutschland)
  3. 3,0 3,1 Buttler, K. P.; May, R. & Metzing D. (2018): Liste der Gefäßpflanzen Deutschlands. - BfN-Skripten 519, 286 S. (Datenquellen: checklisten.rotelistezentrum.de/api/public/1/checklist/355; taxon/557481 – für das Gebiet Deutschland)

Erarbeitet im Rahmen des Projektes „WIPs-De – Aufbau eines nationalen Verbundes zum Schutz gefährdeter Wildpflanzenarten in besonderer Verantwortung Deutschlands“.

Kennbild Bundesministerium für Umweit, Naturschutz und nukleare SicherheitKennbild Bundesministerium für NaturschutzKennbild botanischer Wildpflanzenschutz Deutschland (WIPs-De)Kennbild Botanischer Garten, Universität Potsdam (botanischer-garten-potsdam.de)

Gefördert durch das Bundesamt für Naturschutz mit Mitteln des Bundesministeriums für Umwelt, Naturschutz, nukleare Sicherheit und Verbraucherschutz.